ФЛ6000Двомадулярний хлорофлуоресцентний вимірювач

ФЛ6000Двомодульний хлорофлуоресцентор є останньою оновленою версією двомодульного хлорофлуоресцентора FL3500, спеціально призначеного для потужного наукового інструменту для глибокого вивчення механізмів фотосинтезу мікроводоростей, хлорогледів або суспензій кіст, таких як блакитно-зелені або зелені водорости. Інструмент має двоканальне управління вимірюванням, що може контролювати температуру вимірювання зразка, і оснащений одноповернутим світлом (STF), вбудованим різними процедурами вимірювання, які можуть бути модифіковані користувачем, і може проводити різні глибокі механізми дослідження хлорофлуоресценції на міжнародному рівні. Його основна конструкція складається з оптичної вимірювальної головки, що містить стандартну чашку для зразка суспензії, вбудовані 3 набори світлодіодних джерел світла та 1 1 МГц / 16-бітний детектор сигналу PIN-діоду для перетворення AD. Прибыток та інтегральний час перетворення AD можна контролювати за допомогою програмного забезпечення. Детектор вимірює хлорофлуоресцентний сигнал з роздільною здатністю до 4 мкс (швидка версія - 1 мкс).

Сфера застосування:

·Власності фотосинтезу рослин та скринінг порушень метаболізму

·Виявлення біологічного та небіологічного примусу

·Дослідження протисильності або сприйнятливості рослин

·Дослідження метаболічного хаосу

·Дослідження механізму роботи фотосинтезу

·Дослідження стратегії фотофізіологічного реагування на примусовий рослинний синтез

Типові зразки:

·Сині водорості (сині бактерії)

·Зелені водорості

·Суспенсія хлорозеленів

·Суспенсія кісток

·Фрагменти рослин

Особливості:

·Вбудовані вимірювання індукції хлорофлуоресценції, вимірювання PAM (імпульсна модуляція), вимірювання швидкої флуоресцентної динаміки OJIP, QA - динаміка повторного окислення, перетворення стану S, гашення хлорофлуоресценції та інші вимірювальні програми є найбільш повнофункціональним хлорофлуоресцентом у світі.

·Технологія подвійної модуляції, двокольорова модуляція вимірювання світла, модульоване фотохімічне світло та постійне фотохімічне світло, можливість вимірювання STF (одноциклічна блискавка), TTF (двоциклічна блискавка) та MTF (багатоциклова блискавка) та налаштована технологія FRR (швидка частота повторення)

·Стандартна роздільна здатність часу до 4 мкс, швидка версіяДо 1 мкс - найвища роздільна здатність хлорофлуоресценту

·Урядок управління є двоканальним, може бути підключений датчик температури для контролю температури, підключений блок вимірювання кисню для вимірювання реакції Хілла тощо

·Висока чутливість, мінімальна межа виявлення 100ng Chla/L

·Колір та інтенсивність джерела світла для вимірювання світла, фотофіксованого світла та насиченого однозворотного світла можуть бути налаштовані на замовлення

·Кольоровий сенсорний дисплей для перегляду флуоресцентних діаграм в режимі реального часу

Технічні параметри:

·Експериментальна процедура: вимірювання ефекту індукції флуоресценції хлорофліфом Каутського; PAM (імпульсна модуляція)Флуоресцентна динаміка гашеннявимірювання; Швидке вимірювання флуоресцентної динаміки OJIP; QA – реокислювальна динаміка; Перетворення стану S; Швидка хлорофлуоресцентна індукція

• Флуоресцентні параметри:

уПАМВимірювання динаміки флуоресцентного гашення: вимірювання кривої динаміки флуоресцентного гашення, розрахунок F₀ФМ, ФВ, Ф₀’,Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm’,Rfd,qN,qP,ЕТРпонад 50 хлорофлуоресцентних параметрів;

уОГІПШвидке вимірювання флуоресцентної динаміки: вимірювання кривої швидкої флуоресцентної динаміки OJIP з обчисленням F₀FJ, Fi, Fm, Fv, VJ, Vi, Fm / F₀ФВ / Ф₀Fv / Fm, M0, площа, фіксована площа, SM, SS, N, Phi_P₀Псі_₀Пі_E₀з Phi_D₀Phi_Pav, ABS / RC, TR₀/ РКі ET₀/ РКДі₀/ РКпонад 20 параметрів;

уКАКІНЕТИКА РЕОКСИДАЦІЇ (QA-reoxidation kinetics): вимірювання кривої КІНЕТИКИ РЕОКСИДАЦІЇ (QA-reoxidation kinetics), яка використовується для відповідних амплітад (A1, A2, A3) та часових констант (T1, T2, T3) швидкої, середньої та повільної фаз процесу РЕОКСИДАЦІЇ (QA-reoxidation phase)

уСПеретворення стану (S-state test): вимірювання кривої деградації флуоресценції S-state test для підходу до розрахунку неактивної світлової системи II (PSII)_ХКількість реакційних центрів

уІндукція флеш-флуоресценції (Flash Fluorescence Induction, FFL): для розрахунку ефективної площі антени, підключення антени тощо

уІндивідуальний протокол для гетерогенності антени PSIIаЗ PSIIβАналіз, ефективний розріз антени PSII (sПСІІВимірювання інших параметрів (необхідно налаштувати функцію)

уКАКрива динаміки окислення таS-стан випробуванняКрива флуоресцентного деградації (Лі，2010）

·Часова роздільна здатність (частота вибору): детектор високої чутливості, стандартна роздільна здатність 4 мкс, швидка версія - 1 мкс

·Мінімальна межа виявлення: стандартна версія 100ng Chla / L, швидка версія 1μg Chla / L

·Управління: кольоровий сенсорний дисплей для перегляду флуоресцентних діаграм в режимі реального часу

·Вимірювальна кімната:

абоВимірювання блиску: 623 нм червоного помаранчевого світла і 460 нм блакитного світла, час блиску 2-5 мкс

абоНасичений блиск в одному циклу: максимальна інтенсивність світла 170000 мкмоль (фотонів) / м2.с, час блиску 20-50 мкс

абоПостійне фотохімічне світло: максимальна інтенсивність світла 3500 µmol (фотони) / m².s

абоФлуоресцентний детектор: ПІН-оптодиод

абодо нПеретворювач: 16bit

абоЗбірка трубки: розмір дна 10 × 10 мм, об'єм 4 мл

• Індивідуальна камера вимірювання (необхідно): можливість індивідуального вимірювання кольору світла, насиченого блиску та фотохімічного світла (синій, синій, бурштиновий тощо) та діапазонів виявлення (ChlA, ChlB)

• Джерело далекого інфрачервоного світла (необхідно): для вимірювання F₀Довжина хвилі 730 нм

·Модуль вимірювання кисню (опційно): вимірювання вивільнення кисню водоростями

·Температурний регулятор TR 6000, температурний діапазон 5-60 ° C, точність 0,1 ° C

• Електромагнітне змішування (опційно): для змішування зразків, щоб запобігти осадкам зразків, ручне регулювання швидкості або автоматичне управління програмним забезпеченням

• Інтерфейс зв'язку: Серійний порт RS232 / USB

FluorWinПрограмне забезпечення: визначення або створення експериментальних схем, налаштування керування джерелом світла, вивод даних, аналітична обробка та відображення діаграм

Типові застосування:

1. Дослідники Інституту аквабіології Китайської академії наук Ван Цзян, використовуючи хлорофлуоресцентор FL3500 (модель до FL6000) і систему теплоосвітлення рослин TL, показали, що натискання нітритів спочатку впливає на сторону рецептора PSII Synechocystis sp. PCC 6803 (Zhan X, et al, 2017). Вивчення цього глибокого механізму фотосинтезу часто вимагає співпраці обох інструментів.

2.Дослідник Сіньцзянського інституту екології та географії Китайської академії наук Пан Чуняун та його тематична група використали хлорофлуоресцентор FL3500 (до моделі FL6000) для глибокого дослідження токсичності різних шкідливих речовин для водоростів у навколишньому середовищі, таких як важкі метали, солі, токсичні сполуки, гербіциди, пестициди та антибіотики. За допомогою унікальної програми вимірювання флуоресценції хлорофілу, наприклад, швидкого вимірювання флуоресценційної динаміки OJIP з високою роздільною здатністю FL3500, QA - реоксидання динаміки та перетворення стану S, повне виявлення токсичних механізмів пошкодження систем фотосинтезу водоростей різними концентраціями та часом обробки та їх екологічного впливу. В даний час група Пан Хуанг використовує FL3500 (до моделі FL6000) для опублікації понад двадцяти статей високого рівня в міжнародних та вітчизняних основних журналах SCI.

Місце походження: Чехія

Посилання:

1. Manaa A, et al. 2019. Толерантність соленості кіноа (Кіноа ChenopodiumWilld), як оцінюється ултраструктурою хлоропласту та фотосинтетичною продуктивністю. Екологічна та експериментальна ботаніка 162: 103-114

2. Ю З, та інші. 2019. Чутливість Chlamydomonas reinhardtii до кадмієвого стресу пов'язана з фототаксисом. Науки про навколишнє середовище: процеси та впливи 21: 1011-1020

3. Liang Y, et al. 2019. Молекулярні механізми температурної аклімації та адаптації в морських діатомах. Журнал ISME, DOI: 10.1038/s41396-019-0441-9

4. Orfanidis S, et al. 2019. Вирішення евтрофікації цианобактерій за допомогою біотехнології. Прикладні науки 9(12): 2566

5. Sicora C I, et al. 2019. Функція PSII вЦіанотекаsp. ATCC 51142 під час світло-темного циклу. Дослідження фотосинтезу 139(1-3): 461-473

6. Смітерс А. Л. та ін. 2019. Вплив поезії наХлорелла вульгарісНецільовий організм. Хімосфера 219: 704-712

7. Albanese P, et al. 2018. Модуляція тілокоїдного протеома в горохових рослинах, вирощуваних при різних випромінюваннях: кількісне протеомне профілювання вМодель організму за допомогою інтеграції транскриптомічних даних. Журнал рослин 96(4): 786-800

8. Антал Т, Конюхов І, Волгушева А та ін. 2018. Система індукції та релаксації флуоресценції хлорофілу для безперервного моніторингу фотосинтетичної потужності у фотобіореакторах. Physiol Plantarum. DOI: 10.1111/ppl.12693

9. Antal T K, Maslakov A, Yakovleva O V, et al. 2018.Моделювання кінетики підйому та розпаду флуоресценції хлорофілу та змін поглинання, пов'язаних з P700, за допомогою методу кінетики Монте-Карло, заснованого на правилах. Дослідження фотосинтезу. DOI: 10.1007 / s11120-018-0564-2

10.Biswas S, Eaton-Rye J J, et al. 2018. PsbY необхідний для запобігання фотопошкодженню фотосистеми II у мутанті, що не має PsbMСинехоцистспец. ПЦК 6803. Фотосинтеза, 56(1), 200–209.

11.Bonisteel E M, et al. 2018. Специфічні відмінності штаму в швидкості відновлення Фотосистеми II у пікоціанобактерій корелюють з відмінностями рівня білка FtsH та шаблонами експресії ізоформ. PLoS ONE 13(12): e0209115.

12.Fang X, et al. 2018. Транскриптомічні відповіді морських цианобактерійПрохлорококкудо продуктів вірусного лізу. Мікробіологія навколишнього середовища, doi: 10.1101/394122.

13.Кутанова Трскова Е, Бельгія Е, Єйтс А М та ін. 2018. Чутливість антени до протонів визначає стратегію збору фотосинтетичного світла, Журнал експериментальної ботаніки 69(18): 4483-4493